凝膠法常用的方法有三種,即試管法、玻片法及毛細吸管法。
試管法
將等量的被檢樣品與鱟試劑加入試管,混勻,放入水浴中讓其充分反應,然后取出觀(guān)察凝膠形成的情況。實(shí)驗時(shí)共需作四種試管,即試驗管、陽(yáng)性對照管、陰性對照管及陰性抑制對照管。
試驗管:取標本0.1ml+鱟試劑0.1ml。一般的標本如水、注射液等,實(shí)驗前不須加以處理,但血液及腹腔滲出液等實(shí)驗前必須加以處理,因為在這些標本中可能會(huì )有LT(Limulus test,鱟試劑法)反應的抑制物質(zhì)。應用的鱟試劑應事前以標準內毒素進(jìn)行標定,并認為是可用的。
陽(yáng)性對照管:標準內毒素0.1ml+鱟試劑0.1ml。標準內毒素用前應以WHO標準品標定。所用的內毒素濃度按鱟試劑的敏感性而定,一般為1~5 ng/ ml。
陰性對照管:無(wú)熱原水0.1ml+鱟試劑0.1ml。
抑制對照管:標本0.1ml+標準內毒素0.1ml+鱟試劑0.2ml。
上述四管均放入37℃孵育1~2小時(shí)觀(guān)察結果。如形成凝膠堅固,試管倒轉180度不變形,則記為(++);如混濁度和粘滯性明顯增加,呈膠體狀,但傾斜試管時(shí)變形,則記為(+);如液體流動(dòng)自如,透明無(wú)變化或稍混濁,有少量顆粒細絮片狀物,則記為(-)。
如被檢樣品中有抑制物存在,則可將檢品作適當的稀釋或經(jīng)各種處理以除去抑制物,再次測試。如這些方法無(wú)效,亦可采用其它內毒素檢測法,如RT(Rabbit pyrogen test,家兔熱原實(shí)驗)法。
玻片法
鑒于試管法耗費鱟試劑量多,結果判定不易標準化,需用時(shí)間較長(cháng)等缺點(diǎn),Frauch于1974年首先創(chuàng )用了玻片法。將10μl鱟試劑與已處理過(guò)的被檢樣品10μl滴于無(wú)菌無(wú)熱原的玻片上,充分混勻,水平放置37℃30分鐘,取出觀(guān)察結果。如標本中含有內毒素,則混合物形成凝膠,倒轉玻片時(shí)混合物不流動(dòng),觸之較結實(shí)。反之則說(shuō)明樣本中不含內毒素或內毒素含量過(guò)低。
Goto等于1977年對此法進(jìn)行了兩點(diǎn)改進(jìn)。①增加鱟試劑及樣品的量,所用量各為20μl。由于Frauch法僅用10μl的鱟試劑及10μl的被檢標本,量太少,且形成凝膠后其體積更小,不易判斷結果。故各增加鱟試劑及被檢標本量1倍,這樣結果判定更正確、容易些。②使用不含硅的玻片。由于硅玻璃組成的玻片,滴加在其上的液體可向四周擴散,而顯得不規則。不含硅的玻片可使滴加在其上的液體保持穩定,不向四周擴散,這樣,為結果的判斷提取了方便。
毛細吸管法
此法由瑞典學(xué)者Gardi于1980年首先創(chuàng )用。將10μl被檢標與10μl鱟試劑滴于無(wú)菌無(wú)熱原的載玻片上,充分混勻,然后以毛細吸管吸入其內(一般為2/3的高度),水平37℃孵育45-60分鐘,取出毛細吸管,再浸入溴酚染料中2~3秒鐘,取出即可判斷結果。如染料能進(jìn)入毛細吸管,則說(shuō)明樣品中無(wú)內毒素或所含的內毒素量低于鱟試劑檢測的敏感度記為(-);如有堅固凝膠形成以致染色不能浸入,即說(shuō)明樣本含有內毒素,記為(+)。此法敏感性高、操作簡(jiǎn)便、所需試劑量少、孵育時(shí)間短,結果判斷較客觀(guān)。
我們實(shí)驗室于1982-1983年間應用毛細吸管微量測定法對臨床的多種標本進(jìn)行了內毒素檢測,結果較為滿(mǎn)意,認為此法值得在臨床上廣泛推廣。
目前,日本已有專(zhuān)門(mén)的內毒素微量檢測管出售,這種毛細吸管內已裝有微量的凍干鱟試劑,只需將此管插入液相標本,取出孵育一定的時(shí)間后即能判斷結果。